Composition chimique et activité biologique d’une espèce de la famille des Apiacées / Talaout,Assia  

Public ISBD Titre : Composition chimique et activité biologique d’une espèce de la famille des Apiacées Type de document : texte imprimé Auteurs : Talaout,Assia, Auteur ; Mezache,Nadjet, Directeur de thèse Editeur : Setif:UFA Année de publication : 2018 Importance : 1 vol (88 f .) Format : 29 cm Langues : Français (fre) Catégories : Thèses & Mémoires:Chimie Mots-clés : Screening phytochimique CCM, Métabolites secondaires Apiacées Extraction Polyphénols totaux Flavonoïde totaux Activité antioxydante Index. décimale : 615.19 Chimie pharmaceutique Résumé : Notre travail a pour objectif l’étude phytochimique et l’évaluation biologique de l’activité antioxydante d’une plante Algérienne appartenant à la famille des Apiacées. Le screening phytochimique des parties aériennes de cette espèce qui a été basée sur des réactions de coloration ou de précipitation et sur la chromatographie sur couche mince a montré que notre plante renferme des métabolites secondaires importants, tels que les polyphénols, les flavonoïdes, les tanins, les stérols et triterpènes, les coumarines et les saponosides. L’estimation des polyphénols et des flavonoides totaux a été réalisée sur des extraits méthanoliques et éthanoliques obtenus par les deux méthodes d’extractions (macération et ultrasons). Le résultat a montré que le méthanol est le meilleur solvant d’extraction par macération (15,75 % de rendement) des polyphénols totaux (157,819 ± 3,733 mgEAG/g d’extrait) et de flavonoïdes totaux (23,736 ± 0,974 mgEQ/g /g d’extrait) que l’éthanol (3,87 % de rendement) (116,604 ± 5,214 mgEAG/g d’extrait, 17,973 ± 3,804 mgEQ/g d’extrait). Enfin, l’évaluation de l’activité antioxydant en utilisant le test au DPPH a montré que l’extrait méthanolique exerce une bonne activité (0,338 ± 0,012 mg/mL), plus importante que celle de l’extrait éthanolique (0,535 ± 0,001 mg/mL) en comparaison avec le BHT dont la concentration inhibitrice égale à 0,112 ± 0,001 mg/mL. Les résultats ont révélé que le méthanol est le meilleur solvant d’extraction par macération des composés antioxydants pour notre plante. Note de contenu : sommaire Liste des Tableaux………………………………………………………………………… I Liste des Figures………………………………………………………………………….. II Liste des abréviations…………………………………………………………………….. IV INTRODUCTION Introduction………………………………………………………………………………. 1 Références bibliographiques……………………………………………………………… 3 Chapitre I : Synthèse bibliographiques I. Plantes médicinales et principes actifs ………………………………………………… 4 I. 1. Définition de la phytothérapie………………………………………...................... 4 I. 2. Les plantes médicinales …………………………………………………………… 4 I. 3. Les principes actifs………………………………………………………………… 5 I. 4. Métabolites secondaires …………………………………………………………… 5 I. 4. 1. Définition……………………………………………………………………... 5 I. 4. 2. Différentes classes de métabolites secondaires ………………………………. 5 I. 4. 3. Composés phénoliques……………………………………………………….. 5 I. 4. 3. 1. Les acides phénoliques ………………………………………………… 6 I. 4. 3. 2. Flavonoïdes ……………………………………………………………... 7 I. 4. 3. 2. A. définition…………………………………………………………... 7 I. 4. 3. 2. B. Classification………………………………………………………. 7 I. 4. 3. 2. C. Fluorescence sous la lumière UV………………………………….. 9 I. 4. 3. 3. Coumarines …………………………………………………………….. 10 I. 4. 3. 4. Polyphénols sous forme de polymères………………………………… 11 I. 4. 3. 4. 1. Tanins…………………………………………………………… 11 I. 4. 3. 4. 1. A. Tanins hydrolysables ……….………………………………….. 11 I. 4. 3. 4. 1. B. Tanins condensés ………………………………………………. 11 I. 4. 3. 4. 2. Lignines …………………………………………………………… 12 I. 4. 3. 5. Terpènoides …………………………………………………………….. 13 I. 4. 3. 6. Stéroïdes ………………………………………………………………… 14 I. 4. 3. 7. Alcaloïdes ………………………………………………………………. 14 I. 4. 3. 8. Saponosides…………………………………………………………….. 15 I. 5. Biosynthèse des composés phénoliques ……………………………………….. 16 I. 5. 1. La voie de l’acide shikimique …………………………………………….. 16 I. 5. 2. La voie de l’acide malonique ……………………………………………… 16 I. 6. Propriétés biologiques des composés phénoliques (thérapeutique)…………… 17 I. 6. 1. Activité Biologique…………………………………………………………. 18 I. 6. 1. 1. Activité antioxydante …………………………………………………. 18 I. 6. 1. 1. a. Relation structure-activité antioxydante…………………………. 18 I. 6. 1. 1. b. Activité anti-radicalaire et Stress oxydant……………………… 19 I. 6. 1. 1. c. Radicaux libres ………………………………………………….. 20 I. 6. 1. 2. Les polyphénols comme antioxydants ……………………………….. 20 I. 7. La famille des Apiacées …………………………………………………….. 21 I. 7. 1. Systématique des Apiaceae………………………………………………… 21 I. 7. 2. Intérêt biologique de la famille des Apiaceae …………………………….. 22 I. 7. 3. Métabolites secondaires isolés de la famille des Apiacées………………… 24 References Bibliographiques I……………………………………….............................. 25 Chapitre II: Matériels et Méthodes II. 1. Matériel végétal…………………………………………………………………….. 31 II. 2. Screening phytochimique ………………………………………............................... 31 II. 2. 1. Mise en évidence des composés poly-phénoliques ……………...................... 31 II. 2. 1. 1. Mise en évidence des polyphénols……………………………………… 32 II. 2. 1. 2. Mise en évidence des flavonoïdes……………………………………… 33 II. 2. 1. 3. Mise en évidence des tanins…………………………………………….. 34 II. 2. 1. 4. Mise en évidence des coumarines ………………………………………. 35 II. 2. 1. 5. Mise en évidence des anthocyanes ……………………………………. 36 II. 2. 2. Mise en évidence des triterpènes et des stérols…………………………….. 37 II. 2. 3. Mise en évidence des alcaloïdes ……………………………………………… 38 II. 2. 4. Mise en évidence des saponosides …………………………………………… 40 II. 3. Méthodologie d’extractions………………………………………………………… 42 II. 3. 1. Extraction assistée par macération (EAM)……………………………………. 42 II. 3. 2. Extraction assistée par ultrasons (EAU) …………………………………….. 43 II. 4. 3. Détermination de rendement…………………………………………………... 44 II. 4. 3. Détermination de rendement………………………………………………… 44 II. 4. Analyses chromatographiques…………………………………………………….. 45 II. 4. 1. Chromatographie sur couche mince (CCM)………………………………… 45 II. 5. Analyse quantitative ……………………………………………………………….. 47 II. 5. 1. Dosage des composés phénoliques totaux……………………………………. 47 II. 5. 2. Dosage des flavonoïdes……………………………………………………… 48 II. 6. Etude Biologique………………………………………………………………….. 49 II. 6. 1. Test DPPH ………………………………………………………………….. 49 II. 6. 1. 1. Calcule du pourcentage d’inhibition…………………………………... 51 II. 6. 1. 2. Détermination d’IC50………………………………………………….. 51 II. 6. 1. 3. Analyse statistique …………………………………………………….. 51 Références Bibliographiques II…………………………………………………………. 52 Chapitre III: Résultats et discussion III. 1. Screening chimique………………………………………….................................. 54 III. 1. 1. Tests phytochimiques ………………………………………….................... 54 III. 1. 1. 1. Polyphenols…………………………………………………………… 55 III. 1. 1. 2. Flavonoïdes…………………………………………………………… 55 III. 1. 1. 3. Tanins catéchiques …………………………………………………… 56 III. 1. 1. 4. Tanins galliques ……………………………………………………… 56 III. 1. 1. 5. Anthocyanes………………………………………………………….. 57 III. 1. 1. 6. Coumarines ………………………………………………………….. 57 III. 1. 1. 7. Triterpènes et stérols…………………………………………………. 58 III. 1. 1. 8. Alcaloïdes ……………………………………………………………. 58 III. 1. 1. 9. Saponosides …………………………………………………………. 59 III. 1. 2. Analyses chromatographiques…………………………………………………. 60 III. 1. 2. 1. Chromatographie sur couche mince (CCM)…………………………….. 67 III. 2. Détermination de rendement……………………………………………………... 69 III. 3. Analyse quantitative……………………………………………………………… 69 III. 3. 1. Dosage des polyphénoliques et des flavonoïdes totaux…………………… 71 III. 4. Teste DPPH………………………………………………………………………. 71 III. 4. 1. Pourcentage d’inhibition de DPPH……………………………………….. 74 III. 4. 2. Concentration inhibitrice à 50% des extraits (IC50)… …………………… 77 References Bibliographiques III………………………………………………………… 77 Conclusion………………………………………………………………………………. 78 Annexe………………………………………………………………………………… 80 Résumé Côte titre : MACH/0088 En ligne : https://drive.google.com/file/d/1Gc32lBz9tlt3tu1Wj26Pbn12XgF5L3nc/view?usp=shari [...] Format de la ressource électronique : pdf Composition chimique et activité biologique d’une espèce de la famille des Apiacées [texte imprimé] / Talaout,Assia, Auteur ; Mezache,Nadjet, Directeur de thèse . - [S.l.] : Setif:UFA, 2018 . - 1 vol (88 f .) ; 29 cm. Langues : Français (fre) Catégories : Thèses & Mémoires:Chimie Mots-clés : Screening phytochimique CCM, Métabolites secondaires Apiacées Extraction Polyphénols totaux Flavonoïde totaux Activité antioxydante Index. décimale : 615.19 Chimie pharmaceutique Résumé : Notre travail a pour objectif l’étude phytochimique et l’évaluation biologique de l’activité antioxydante d’une plante Algérienne appartenant à la famille des Apiacées. Le screening phytochimique des parties aériennes de cette espèce qui a été basée sur des réactions de coloration ou de précipitation et sur la chromatographie sur couche mince a montré que notre plante renferme des métabolites secondaires importants, tels que les polyphénols, les flavonoïdes, les tanins, les stérols et triterpènes, les coumarines et les saponosides. L’estimation des polyphénols et des flavonoides totaux a été réalisée sur des extraits méthanoliques et éthanoliques obtenus par les deux méthodes d’extractions (macération et ultrasons). Le résultat a montré que le méthanol est le meilleur solvant d’extraction par macération (15,75 % de rendement) des polyphénols totaux (157,819 ± 3,733 mgEAG/g d’extrait) et de flavonoïdes totaux (23,736 ± 0,974 mgEQ/g /g d’extrait) que l’éthanol (3,87 % de rendement) (116,604 ± 5,214 mgEAG/g d’extrait, 17,973 ± 3,804 mgEQ/g d’extrait). Enfin, l’évaluation de l’activité antioxydant en utilisant le test au DPPH a montré que l’extrait méthanolique exerce une bonne activité (0,338 ± 0,012 mg/mL), plus importante que celle de l’extrait éthanolique (0,535 ± 0,001 mg/mL) en comparaison avec le BHT dont la concentration inhibitrice égale à 0,112 ± 0,001 mg/mL. Les résultats ont révélé que le méthanol est le meilleur solvant d’extraction par macération des composés antioxydants pour notre plante. Note de contenu : sommaire Liste des Tableaux………………………………………………………………………… I Liste des Figures………………………………………………………………………….. II Liste des abréviations…………………………………………………………………….. IV INTRODUCTION Introduction………………………………………………………………………………. 1 Références bibliographiques……………………………………………………………… 3 Chapitre I : Synthèse bibliographiques I. Plantes médicinales et principes actifs ………………………………………………… 4 I. 1. Définition de la phytothérapie………………………………………...................... 4 I. 2. Les plantes médicinales …………………………………………………………… 4 I. 3. Les principes actifs………………………………………………………………… 5 I. 4. Métabolites secondaires …………………………………………………………… 5 I. 4. 1. Définition……………………………………………………………………... 5 I. 4. 2. Différentes classes de métabolites secondaires ………………………………. 5 I. 4. 3. Composés phénoliques……………………………………………………….. 5 I. 4. 3. 1. Les acides phénoliques ………………………………………………… 6 I. 4. 3. 2. Flavonoïdes ……………………………………………………………... 7 I. 4. 3. 2. A. définition…………………………………………………………... 7 I. 4. 3. 2. B. Classification………………………………………………………. 7 I. 4. 3. 2. C. Fluorescence sous la lumière UV………………………………….. 9 I. 4. 3. 3. Coumarines …………………………………………………………….. 10 I. 4. 3. 4. Polyphénols sous forme de polymères………………………………… 11 I. 4. 3. 4. 1. Tanins…………………………………………………………… 11 I. 4. 3. 4. 1. A. Tanins hydrolysables ……….………………………………….. 11 I. 4. 3. 4. 1. B. Tanins condensés ………………………………………………. 11 I. 4. 3. 4. 2. Lignines …………………………………………………………… 12 I. 4. 3. 5. Terpènoides …………………………………………………………….. 13 I. 4. 3. 6. Stéroïdes ………………………………………………………………… 14 I. 4. 3. 7. Alcaloïdes ………………………………………………………………. 14 I. 4. 3. 8. Saponosides…………………………………………………………….. 15 I. 5. Biosynthèse des composés phénoliques ……………………………………….. 16 I. 5. 1. La voie de l’acide shikimique …………………………………………….. 16 I. 5. 2. La voie de l’acide malonique ……………………………………………… 16 I. 6. Propriétés biologiques des composés phénoliques (thérapeutique)…………… 17 I. 6. 1. Activité Biologique…………………………………………………………. 18 I. 6. 1. 1. Activité antioxydante …………………………………………………. 18 I. 6. 1. 1. a. Relation structure-activité antioxydante…………………………. 18 I. 6. 1. 1. b. Activité anti-radicalaire et Stress oxydant……………………… 19 I. 6. 1. 1. c. Radicaux libres ………………………………………………….. 20 I. 6. 1. 2. Les polyphénols comme antioxydants ……………………………….. 20 I. 7. La famille des Apiacées …………………………………………………….. 21 I. 7. 1. Systématique des Apiaceae………………………………………………… 21 I. 7. 2. Intérêt biologique de la famille des Apiaceae …………………………….. 22 I. 7. 3. Métabolites secondaires isolés de la famille des Apiacées………………… 24 References Bibliographiques I……………………………………….............................. 25 Chapitre II: Matériels et Méthodes II. 1. Matériel végétal…………………………………………………………………….. 31 II. 2. Screening phytochimique ………………………………………............................... 31 II. 2. 1. Mise en évidence des composés poly-phénoliques ……………...................... 31 II. 2. 1. 1. Mise en évidence des polyphénols……………………………………… 32 II. 2. 1. 2. Mise en évidence des flavonoïdes……………………………………… 33 II. 2. 1. 3. Mise en évidence des tanins…………………………………………….. 34 II. 2. 1. 4. Mise en évidence des coumarines ………………………………………. 35 II. 2. 1. 5. Mise en évidence des anthocyanes ……………………………………. 36 II. 2. 2. Mise en évidence des triterpènes et des stérols…………………………….. 37 II. 2. 3. Mise en évidence des alcaloïdes ……………………………………………… 38 II. 2. 4. Mise en évidence des saponosides …………………………………………… 40 II. 3. Méthodologie d’extractions………………………………………………………… 42 II. 3. 1. Extraction assistée par macération (EAM)……………………………………. 42 II. 3. 2. Extraction assistée par ultrasons (EAU) …………………………………….. 43 II. 4. 3. Détermination de rendement…………………………………………………... 44 II. 4. 3. Détermination de rendement………………………………………………… 44 II. 4. Analyses chromatographiques…………………………………………………….. 45 II. 4. 1. Chromatographie sur couche mince (CCM)………………………………… 45 II. 5. Analyse quantitative ……………………………………………………………….. 47 II. 5. 1. Dosage des composés phénoliques totaux……………………………………. 47 II. 5. 2. Dosage des flavonoïdes……………………………………………………… 48 II. 6. Etude Biologique………………………………………………………………….. 49 II. 6. 1. Test DPPH ………………………………………………………………….. 49 II. 6. 1. 1. Calcule du pourcentage d’inhibition…………………………………... 51 II. 6. 1. 2. Détermination d’IC50………………………………………………….. 51 II. 6. 1. 3. Analyse statistique …………………………………………………….. 51 Références Bibliographiques II…………………………………………………………. 52 Chapitre III: Résultats et discussion III. 1. Screening chimique………………………………………….................................. 54 III. 1. 1. Tests phytochimiques ………………………………………….................... 54 III. 1. 1. 1. Polyphenols…………………………………………………………… 55 III. 1. 1. 2. Flavonoïdes…………………………………………………………… 55 III. 1. 1. 3. Tanins catéchiques …………………………………………………… 56 III. 1. 1. 4. Tanins galliques ……………………………………………………… 56 III. 1. 1. 5. Anthocyanes………………………………………………………….. 57 III. 1. 1. 6. Coumarines ………………………………………………………….. 57 III. 1. 1. 7. Triterpènes et stérols…………………………………………………. 58 III. 1. 1. 8. Alcaloïdes ……………………………………………………………. 58 III. 1. 1. 9. Saponosides …………………………………………………………. 59 III. 1. 2. Analyses chromatographiques…………………………………………………. 60 III. 1. 2. 1. Chromatographie sur couche mince (CCM)…………………………….. 67 III. 2. Détermination de rendement……………………………………………………... 69 III. 3. Analyse quantitative……………………………………………………………… 69 III. 3. 1. Dosage des polyphénoliques et des flavonoïdes totaux…………………… 71 III. 4. Teste DPPH………………………………………………………………………. 71 III. 4. 1. Pourcentage d’inhibition de DPPH……………………………………….. 74 III. 4. 2. Concentration inhibitrice à 50% des extraits (IC50)… …………………… 77 References Bibliographiques III………………………………………………………… 77 Conclusion………………………………………………………………………………. 78 Annexe………………………………………………………………………………… 80 Résumé Côte titre : MACH/0088 En ligne : https://drive.google.com/file/d/1Gc32lBz9tlt3tu1Wj26Pbn12XgF5L3nc/view?usp=shari [...] Format de la ressource électronique : pdf

Exemplaires (1)

Code-barres	Cote	Support	Localisation	Section	Disponibilité
MACH/0088	MACH/0088	Mémoire	Bibliothéque des sciences	Français	Disponible Disponible

Contribution à l’étude phyto chimique d’une plante Algérienne / Belhout ,Intissar  

Public ISBD Titre : Contribution à l’étude phyto chimique d’une plante Algérienne Type de document : texte imprimé Auteurs : Belhout ,Intissar, Auteur ; Mezache,Nadjet, Directeur de thèse Editeur : Setif:UFA Année de publication : 2021 Importance : 1 vol (102 f .) Format : 24 cm Langues : Français (fre) Catégories : Thèses & Mémoires:Chimie Mots-clés : Screening phytochimique CCM Métabolites secondaires Asteraceae Index. décimale : 540 Chimie et sciences connexes Résumé : Notre travail est une étude phytochimique comparative pour la détermination de la composition chimique, des teneurs en phénols et en flavonoïdes totaux et de l’activité antioxydante des trois organes ; fleurs, feuilles et tiges d’une plante de la famille des Astéracées. Le screening phytochimique des parties aériennes de cette espèce qui a été basé sur des réactions de coloration ou de précipitation et sur la chromatographie sur couche mince a montré que notre plante renferme des métabolites secondaires importants, tels que les polyphénols, les flavonoïdes, les tanins catéchiques, les anthraquinones combinées, les stérols et triterpènes, les coumarines et les saponosides. L’estimation des polyphénols et des flavonoïdes totaux a été réalisée sur des extraits hydrométhanoliques des fleurs, des feuilles et des tiges obtenus par macération. Le résultat a montré que l’extrait des feuilles donne le rendement le plus élevés (20 %) et les teneurs en polyphénols totaux des extraits HMeOH des feuilles et des tiges sont très proches et plus importantes (feuilles : 42,191 ± 4,723 mgEAG/g d’extrait, tiges : 40,319 ± 7,521 mgEAG/g d’extrait) que celle des fleurs (30,879±4,506 mgEAG/g). D’autre part, les teneurs en flavonoïdes totaux sont très proches dans les trois extraits ; feuilles : 21,983±1,612 mgEQ/g d’extrait ; tiges : 21,113±0,653 mgEQ/g /g d’extrait et fleurs : 22,644±1,255 mgEQ/g d’extrait. Enfin, l’évaluation du pouvoir antioxydant en utilisant le test au DPPH a montré que l’extrait HMeOH des tiges est le meilleur antioxydant avec une IC50 très proche de celle des feuilles (tiges : 0,0166 ± 0,0011 mg/mL, feuilles : 0,0196 ± 0,0006 mg/mL), plus importante que celle des fleurs (0,225 ± 0,0036 mg/mL) en comparaison avec le BHT dont la concentration inhibitrice égale à 0,01425 ± 0,00015 mg/mL. L’estimation de l’activité antioxydante en utilisant le test acide linoléique/β-carotène à 24 h (AA %) des trois extraits HMeOH est très proche et significative (feuilles, 56,825±1,636 % ; tiges, 54,421±3,811 % ; fleurs, 53,703±2,002 %), mais moins importante que celle du BHT (99,815±3,042 %) qui est le contrôle positive. Les résultats ont révélé que les tiges et les feuilles ont des activités antioxydantes semblables au test acide linoléique / β-carotène et proches et très importantes proche par apport au test DPPH, donc une composition chimique analogue qui est différente de celle des fleurs. Côte titre : MACH/0215 En ligne : https://drive.google.com/file/d/10EiRaLNoNxR11PljP3lCP7Aof8Yh74ue/view?usp=shari [...] Format de la ressource électronique : pdf Contribution à l’étude phyto chimique d’une plante Algérienne [texte imprimé] / Belhout ,Intissar, Auteur ; Mezache,Nadjet, Directeur de thèse . - [S.l.] : Setif:UFA, 2021 . - 1 vol (102 f .) ; 24 cm. Langues : Français (fre) Catégories : Thèses & Mémoires:Chimie Mots-clés : Screening phytochimique CCM Métabolites secondaires Asteraceae Index. décimale : 540 Chimie et sciences connexes Résumé : Notre travail est une étude phytochimique comparative pour la détermination de la composition chimique, des teneurs en phénols et en flavonoïdes totaux et de l’activité antioxydante des trois organes ; fleurs, feuilles et tiges d’une plante de la famille des Astéracées. Le screening phytochimique des parties aériennes de cette espèce qui a été basé sur des réactions de coloration ou de précipitation et sur la chromatographie sur couche mince a montré que notre plante renferme des métabolites secondaires importants, tels que les polyphénols, les flavonoïdes, les tanins catéchiques, les anthraquinones combinées, les stérols et triterpènes, les coumarines et les saponosides. L’estimation des polyphénols et des flavonoïdes totaux a été réalisée sur des extraits hydrométhanoliques des fleurs, des feuilles et des tiges obtenus par macération. Le résultat a montré que l’extrait des feuilles donne le rendement le plus élevés (20 %) et les teneurs en polyphénols totaux des extraits HMeOH des feuilles et des tiges sont très proches et plus importantes (feuilles : 42,191 ± 4,723 mgEAG/g d’extrait, tiges : 40,319 ± 7,521 mgEAG/g d’extrait) que celle des fleurs (30,879±4,506 mgEAG/g). D’autre part, les teneurs en flavonoïdes totaux sont très proches dans les trois extraits ; feuilles : 21,983±1,612 mgEQ/g d’extrait ; tiges : 21,113±0,653 mgEQ/g /g d’extrait et fleurs : 22,644±1,255 mgEQ/g d’extrait. Enfin, l’évaluation du pouvoir antioxydant en utilisant le test au DPPH a montré que l’extrait HMeOH des tiges est le meilleur antioxydant avec une IC50 très proche de celle des feuilles (tiges : 0,0166 ± 0,0011 mg/mL, feuilles : 0,0196 ± 0,0006 mg/mL), plus importante que celle des fleurs (0,225 ± 0,0036 mg/mL) en comparaison avec le BHT dont la concentration inhibitrice égale à 0,01425 ± 0,00015 mg/mL. L’estimation de l’activité antioxydante en utilisant le test acide linoléique/β-carotène à 24 h (AA %) des trois extraits HMeOH est très proche et significative (feuilles, 56,825±1,636 % ; tiges, 54,421±3,811 % ; fleurs, 53,703±2,002 %), mais moins importante que celle du BHT (99,815±3,042 %) qui est le contrôle positive. Les résultats ont révélé que les tiges et les feuilles ont des activités antioxydantes semblables au test acide linoléique / β-carotène et proches et très importantes proche par apport au test DPPH, donc une composition chimique analogue qui est différente de celle des fleurs. Côte titre : MACH/0215 En ligne : https://drive.google.com/file/d/10EiRaLNoNxR11PljP3lCP7Aof8Yh74ue/view?usp=shari [...] Format de la ressource électronique : pdf

Exemplaires (1)

Code-barres	Cote	Support	Localisation	Section	Disponibilité
MACH/0215	MACH/0215	Mémoire	Bibliothéque des sciences	Français	Disponible Disponible

Etude physicochimique d’une espèce de la famille des astéracées par des méthodes chromatographiques classiques. Activité biologique / BELILITA, Fateh

Public ISBD Titre : Etude physicochimique d’une espèce de la famille des astéracées par des méthodes chromatographiques classiques. Activité biologique Type de document : texte imprimé Auteurs : BELILITA, Fateh ; Mezache,Nadjet, Directeur de thèse Editeur : Setif:UFA Année de publication : 2013 Importance : 1vol. 52f. Format : 30cm. Catégories : Thèses & Mémoires:Chimie Mots-clés : phytochimique,espece,famille,asteracees,methodes,chromatographiques,classiques,activite,biologique Résumé : Résumé Ce travail concerne la détermination structurale et l’évaluation biologique de substances naturelles isolées d’une espèce du genre Centaurea de la famille Asteraceae. Cette étude a mené à l’isolement de deux flavonoïdes (l’hispiduline et l’eupafoline) de l’extrait dichlorométhanique des parties aériennes de cette plante en utilisant la chromatographie sur colonne de gel de silice (CC). Les structures des composés isolés ont été élucidées par l’utilisation de la technique RMN 1D et la spectroscopie UV. L’évaluation biologique de l’activité antibactérienne a montré que l’eupafoline à faibles concentrations possède une activité modérée contre la bactérie Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853 et que ce pouvoir antibactérien peut être renforcé en augmentant la concentration de ce composé. Mots clés : Asteraceae, Centaurea, flavonoïdes, activité antibacterienne Note de contenu : sommaire Tableau I. 1 : Quelques constituants chimiques de la camomille………………………....8 Tableau I. 2 : Structures chimiques des flavonoïdes isolés de quelques espèces du genre Centaurea………………………………………………………....10 Tableau I. 3: Les principales classes de flavonoïdes……………………………………...12 Tableau I. 4: Fluorescences des flavonoïdes sous lampes UV (365 nm)……………..…...15 Tableau I. 5: La relation entre le Rf et la structure des flavonoïdes…………………...….16 Tableau I. 6 : Déplacements des maximums des bandes I et II remarqués dans le méthanol des principales classes de flavonoïdes…………………..…....17 Tableau I. 7 : Interprétation des déplacements des maximums des bandes après addition des réactifs…………………………………………………….…...19 Tableau II. 1: Résultats de la séparation par chromatographie sur colonne de gel de silice de l’extrait dichlorométhane………………………………………30 Tableau II. 2 : Comportement chromatographique du composé C1……….………..….…31 Tableau II. 3 : Analyse spectroscopie UV du composé C1 en présence de réactifs………32 Tableau II. 4: Données spectrales RMN 1H du composé C1………………………….......34 Tableau II. 5: Comportement chromatographique du composé C2………………………..36 Tableau II. 6: Analyse spectroscopie UV du composé C2 en présence de réactifs…..…....37 Tableau II. 7: Données spectrales RMN 1H du composé C2.…………….………….…....38 Tableau III. 1: Résultats de l’activité antibactérienne réalisée sur les composés C1 (Hispiduline) et C2 (Eupafolin) et l’extrait dichlorométhane………….……………..44 Figure I. 1: Structures chimiques des quelques produits isolés de la camomille……………8 Figure I. 2: Photos des fleurs de quelques espèces du genre Centaurea……………………9 Figure I. 3: Structures chimiques des sesquiterpènes lactones isolés de quelques espèces du genreCentaurea……………...........................................................................10 Figure I. 4: Structures chimiques de différents composés isolés de quelques espèces du genre Centaurea…………………………………………………………………11 Figure.I.5:2phénylchromane………………………………………………………………..12 Figure I. 6: Forme limites de type cynnamoyle ou benzoyle…………………………….....17 Figure I. 7: Formation de complexes en présence de H3B03 et NaOAc…...........................18 Figure I. 8 : Les complexes stables et labiles entre les flavonoïdes et AlCl3 avant et après l’addition de HCl…………………………..........................................18 Figure II. 1: Plaque CCM analytique sur gel de silice de l’extrait dichlorométhane dans le système EP-AcOEt 1 :1………………………………………………..28 Figure II. 2: Schéma générale d’extraction de la partie aérienne de la plante de la famille des Astéracées genre Centaurea…………………………………29 Figure II. 3: Spectre UV-Visible du composé C1 dans le méthanol……………………....31 Figure II. 4: Série spectrale UV du composé C1…………...………………………………33 Figure II. 5: Spectre RMN 1H (500 MHz, MeOH-d4) du composé C1……………..…….35 Figure II. 6: Spectre UV-Visible du composé C2 dans le méthanol…………………….....36 Figure II. 7: Série spectrale UV du composé C2………………………………………..…39 Figure II. 8: Spectre RMN 1H (500 MHz, MeOH-d4) du composé C2………….………..40 Annexe Figure 2: Colonne de gel de silice…………………………………………………….…….50 Figure 1: Photo d'un extracteur au Soxhlet………………………………………………….51 Côte titre : MACH/0012 Etude physicochimique d’une espèce de la famille des astéracées par des méthodes chromatographiques classiques. Activité biologique [texte imprimé] / BELILITA, Fateh ; Mezache,Nadjet, Directeur de thèse . - [S.l.] : Setif:UFA, 2013 . - 1vol. 52f. ; 30cm. Catégories : Thèses & Mémoires:Chimie Mots-clés : phytochimique,espece,famille,asteracees,methodes,chromatographiques,classiques,activite,biologique Résumé : Résumé Ce travail concerne la détermination structurale et l’évaluation biologique de substances naturelles isolées d’une espèce du genre Centaurea de la famille Asteraceae. Cette étude a mené à l’isolement de deux flavonoïdes (l’hispiduline et l’eupafoline) de l’extrait dichlorométhanique des parties aériennes de cette plante en utilisant la chromatographie sur colonne de gel de silice (CC). Les structures des composés isolés ont été élucidées par l’utilisation de la technique RMN 1D et la spectroscopie UV. L’évaluation biologique de l’activité antibactérienne a montré que l’eupafoline à faibles concentrations possède une activité modérée contre la bactérie Pseudomonas aeruginosa ATCC 27853 et que ce pouvoir antibactérien peut être renforcé en augmentant la concentration de ce composé. Mots clés : Asteraceae, Centaurea, flavonoïdes, activité antibacterienne Note de contenu : sommaire Tableau I. 1 : Quelques constituants chimiques de la camomille………………………....8 Tableau I. 2 : Structures chimiques des flavonoïdes isolés de quelques espèces du genre Centaurea………………………………………………………....10 Tableau I. 3: Les principales classes de flavonoïdes……………………………………...12 Tableau I. 4: Fluorescences des flavonoïdes sous lampes UV (365 nm)……………..…...15 Tableau I. 5: La relation entre le Rf et la structure des flavonoïdes…………………...….16 Tableau I. 6 : Déplacements des maximums des bandes I et II remarqués dans le méthanol des principales classes de flavonoïdes…………………..…....17 Tableau I. 7 : Interprétation des déplacements des maximums des bandes après addition des réactifs…………………………………………………….…...19 Tableau II. 1: Résultats de la séparation par chromatographie sur colonne de gel de silice de l’extrait dichlorométhane………………………………………30 Tableau II. 2 : Comportement chromatographique du composé C1……….………..….…31 Tableau II. 3 : Analyse spectroscopie UV du composé C1 en présence de réactifs………32 Tableau II. 4: Données spectrales RMN 1H du composé C1………………………….......34 Tableau II. 5: Comportement chromatographique du composé C2………………………..36 Tableau II. 6: Analyse spectroscopie UV du composé C2 en présence de réactifs…..…....37 Tableau II. 7: Données spectrales RMN 1H du composé C2.…………….………….…....38 Tableau III. 1: Résultats de l’activité antibactérienne réalisée sur les composés C1 (Hispiduline) et C2 (Eupafolin) et l’extrait dichlorométhane………….……………..44 Figure I. 1: Structures chimiques des quelques produits isolés de la camomille……………8 Figure I. 2: Photos des fleurs de quelques espèces du genre Centaurea……………………9 Figure I. 3: Structures chimiques des sesquiterpènes lactones isolés de quelques espèces du genreCentaurea……………...........................................................................10 Figure I. 4: Structures chimiques de différents composés isolés de quelques espèces du genre Centaurea…………………………………………………………………11 Figure.I.5:2phénylchromane………………………………………………………………..12 Figure I. 6: Forme limites de type cynnamoyle ou benzoyle…………………………….....17 Figure I. 7: Formation de complexes en présence de H3B03 et NaOAc…...........................18 Figure I. 8 : Les complexes stables et labiles entre les flavonoïdes et AlCl3 avant et après l’addition de HCl…………………………..........................................18 Figure II. 1: Plaque CCM analytique sur gel de silice de l’extrait dichlorométhane dans le système EP-AcOEt 1 :1………………………………………………..28 Figure II. 2: Schéma générale d’extraction de la partie aérienne de la plante de la famille des Astéracées genre Centaurea…………………………………29 Figure II. 3: Spectre UV-Visible du composé C1 dans le méthanol……………………....31 Figure II. 4: Série spectrale UV du composé C1…………...………………………………33 Figure II. 5: Spectre RMN 1H (500 MHz, MeOH-d4) du composé C1……………..…….35 Figure II. 6: Spectre UV-Visible du composé C2 dans le méthanol…………………….....36 Figure II. 7: Série spectrale UV du composé C2………………………………………..…39 Figure II. 8: Spectre RMN 1H (500 MHz, MeOH-d4) du composé C2………….………..40 Annexe Figure 2: Colonne de gel de silice…………………………………………………….…….50 Figure 1: Photo d'un extracteur au Soxhlet………………………………………………….51 Côte titre : MACH/0012

Exemplaires (1)

Code-barres	Cote	Support	Localisation	Section	Disponibilité
MACH/0012	MACH/0012	Mémoire	Bibliothéque des sciences	Français	Disponible Disponible

---

1 (1 - 3 / 3)